葛根素对经IL-1β诱导的大鼠软骨细胞Ⅱ型胶原表达的影响

被引:0
作者
孟祥苗
机构
[1] 福建中医药大学
关键词
骨性关节炎; 白细胞介素-1; 葛根素; 软骨细胞; Ⅱ型胶原;
D O I
暂无
年度学位
2014
学位类型
硕士
导师
摘要
目的: 本实验应用细胞及分子生物学技术,通过研究葛根素对经IL-1β诱导的大鼠软骨细胞中II型胶原的影响,探讨其调节软骨细胞增殖,保护软骨细胞,防治骨关节炎的作用机制,为临床中使用中药葛根治疗骨关节疾病提供实验基础与理论依据。 方法: 1.软骨细胞体外培养体系的建立与鉴定:原代细胞应用联合酶消化法从4周龄SD大鼠关节软骨获取,并以倒置显微镜下的形态学表现及甲苯胺蓝染色进行鉴定; 2.MTT法检测不同浓度的IL-1β对大鼠软骨细胞的影响,筛选适宜的诱导浓度; 3.MTT法检测不同浓度的葛根素对大鼠软骨细胞增殖的影响,筛选最佳干预浓度; 4.采用RT-PCR观察葛根素对IL-1p诱导后软骨细胞COL-II的基因表达的影响; 5. Western Blot检测葛根素对IL-1p诱导后软骨细胞COL-II的蛋白表达的影响。结果: 1.采用联合酶消化方法建立大鼠软骨细胞体外培养体系,经倒置显微镜下形态学观察及甲苯胺蓝染色鉴定,与甲苯胺蓝染色呈异染,确认分离培养的是软骨细胞,软骨细胞培养传3代以内可以保持表型的稳定。 2.关于不同浓度IL-1β诱导后对软骨细胞增殖抑制的变化,以10ng/mlIL-1β诱导48h时对软骨细胞增殖的抑制作用最强。对软骨细胞增殖影响的观察显示:葛根素50、100、200(μmol/L均可促进正常培养软骨细胞的增殖,且增殖效应随药物浓度的增加而递增,在第48h时,对于正常培养的软骨细胞,200[μmol/L葛根素组促进软骨细胞的增殖作用最佳,与对照组比较有显著差异(P<0.05)。 3.RT-PCR结果显示:四组的mRNA扩增产物中都能看到预期长度的Ⅱ型胶原特异性条带。经IL-1β干预组表达明显减弱,与正常组相比有显著性差异(P<0.05);Pue组表达明显增强,与正常组、10ng/ml IL-1β组相比有显著性差异(P<0.05);10ng/mL IL-1β+200μmol/LPue组与10ng/mllL-1β组相比表达明显增强,有显著性差异(P<0.05),与正常组mRNA表达无显著性差异(P>0.05)。 4.Western Blot结果显示:正常情况下,软骨细胞中表达COL-2蛋白,而加入10ng/mL IL-1β后,COL-II蛋白表达明显减弱,其差别具有显著性意义(P<0.05);而200μmol/LPue组能显著上调COL-Ⅱ蛋白表达(P<0.05)。加入200μmol/LPue干预经10ng/mL IL-1β诱导后的大鼠软骨细胞可显著上调被抑制的COL-II蛋白表达,与10ng/mL IL-1β组比较有显著性差异(P<0.05),而与正常组的蛋白表达无明显差异(P>0.05)。结论: 1.IL-1p能够抑制正常培养的大鼠软骨细胞的增殖,且与剂量呈正相关。 2.葛根素能够促进正常培养的大鼠软骨细胞的增殖,且与剂量呈正相关。 3.葛根素能够有效阻止IL-1β对大鼠软骨细胞合成的Ⅱ型胶原在基因表达和蛋白表达的抑制作用。这可能是葛根素有效保护软骨细胞,抵御炎症因子侵蚀,防治骨关节疾病的机制之一。
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页数:42
共 41 条
[1]
Developmental Mechanisms in Articular Cartilage Degradation in Osteoarthritis.[J].Elena V. Tchetina;Henning Bliddal.Arthritis.2010,
[2]
Protein geranylgeranylation controls collagenase expression in osteoarthritic cartilage [J].
Sverdrup, Francis M. ;
Yates, Matthew R. ;
Vickery, Lillian E. ;
Klover, Jon A. ;
Song, Lily R-H. ;
Anglin, Charles P. ;
Misko, Thomas R. .
OSTEOARTHRITIS AND CARTILAGE, 2010, 18 (07) :948-955
[3]
Characterization of pro-apoptotic and matrix-degradative gene expression following induction of osteoarthritis in mature and aged rabbits.[J].C.M. Robertson;A.T. Pennock;F.L. Harwood;A.C. Pomerleau;R.T. Allen;D. Amiel.Osteoarthritis and Cartilage.2005, 5
[4]
The response of elderly human articular cartilage to mechanical stimuli in vitro [J].
Plumb, MS ;
Aspden, RM .
OSTEOARTHRITIS AND CARTILAGE, 2005, 13 (12) :1084-1091
[5]
Chondrogenic differentiation and functional maturation of bovine mesenchymal stem cells in long-term agarose culture.[J].R.L. Mauck;X. Yuan;R.S. Tuan.Osteoarthritis and Cartilage.2005, 2
[6]
Cartilage repair: Generations of autologous chondrocyte transplantation.[J].Stefan Marlovits;Philip Zeller;Philipp Singer;Christoph Resinger;Vilmos Vécsei.European Journal of Radiology.2005, 1
[7]
Immature murine articular chondrocytes in primary culture: a new tool for investigating cartilage.[J].Colette Salvat;Audrey Pigenet;Lydie Humbert;Francis Berenbaum;Sylvie Thirion.Osteoarthritis and Cartilage.2004, 3
[8]
Long-term effects of glucosamine sulphate on osteoarthritis progression: a randomised, placebo-controlled clinical trial [J].
Reginster, JY ;
Deroisy, R ;
Rovati, LC ;
Lee, RL ;
Lejeune, E ;
Bruyere, O ;
Giacovelli, G ;
Henrotin, Y ;
Dacre, JE ;
Gossett, C .
LANCET, 2001, 357 (9252) :251-256
[9]
Proliferation and differentiation potential of chondrocytes from os teoarthritic patients..Tallheden T;Bengts son C;Brants ing C; et al;.Arthritis Res Ther.2005, 03
[10]
Autologous chondrocyte implantation for joint preservation in patients with early osteoarthritis..Minas Tom;Gomoll Andreas H;Solhpour Shahram;Rosenberger Ralf;Probst Christian;Bryant Tim;.Clinical orthopaedics and related research.2010,