决定骨骼发育的转录因子的转录调控机制的研究

被引:0
作者
孙冬梅
机构
[1] 东北师范大学
关键词
转录因子; Runx2; Osterix; Sox; 增殖; 分化; 基因表达; 调控;
D O I
暂无
年度学位
2009
学位类型
博士
摘要
骨是一个极其复杂、不断变化的组织,它的生长过程涉及诸多因素。转录因子是影响骨生长非常重要的因素。Runx2和Osterix是成骨细胞分化和功能及骨形成的两个重要的转录因子。在成骨细胞分化途径中,Osterix处于Runx2下游,但Osterix是否受Runx2的直接调控目前仍不清楚。 通过RT-PCR技术,我们发现在许多非成骨细胞系(包括已分化细胞和间质细胞)和成骨细胞系中瞬时表达Runx2能够诱导Osterix的表达。我们克隆了3.2kb人的Osterix基因5’侧翼区,并将启动子连接到报告基因上进行功能分析。结果显示Runx2能够上调该启动子的活性,并且进一步的实验又证明了在转录起始位点上游1.1kb和0.5kb之间的区域是维持启动子基本活性所必需,同时该区间也同Runx2的上调活性密切相关。在此区间内我们确定了一个Runx2的功能性结合位点“AGTGGTT”,此外还有另一个弱调节位点“TGTGGT”。以上实验数据支持Runx2参与调控Osterix基因的表达的假说。此外,在非成骨细胞中,瞬时转染和荧光素酶双报告实验显示Osterix能上调I-胶原蛋白的2.3kb启动子活性,但Runx2不能。这点差别暗示了在成骨细胞分化中处于Runx2下游的Osterix是激活I-胶原蛋白表达所必需的。 Sox9、L-Sox5和Sox6这三种转录因子是软骨细胞分化和软骨形成所必需的。它们共同作用足以诱导永久性软骨的形成。在软骨细胞分化过程中,这三种转录因子更为精细的调控机制还不为所知。我们利用反转录病毒系统建立了以ATDC5细胞为基础的,过表达L-Sox5、Sox6、Sox9和L-Sox5+Sox9的稳转细胞系,并通过Alcian blue、RT-PCR等方法检测软骨细胞分化程度。用抑制剂来确定与Stat1有关的各个稳转细胞的增殖情况以及MAPK所调节的分化情况。结果表明过表达L-Sox5和Sox6能加快软骨细胞增殖,抑制分化;过表达Sox9显著抑制增殖,但却能提高软骨特异性基因的表达。如果外源L-Sox5与Sox9的比例接1:1,便能使增殖和分化在很大程度上接近正常。此外Sox转录因子表达状态的变化能够调控Stat1的表达变化,也使MAPK途径产生不同应答。这些实验结果说明Sox转录因子之间的比例变化能够调控软骨细胞的增殖和分化。在软骨中,胞外信号之所以造就了不同类型的软骨细胞(增殖或分化)至少部分是通过建立不同的Sox比例实现的。
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页数:72
共 32 条
[1]
Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors [J].
Takahashi, Kazutoshi ;
Tanabe, Koji ;
Ohnuki, Mari ;
Narita, Megumi ;
Ichisaka, Tomoko ;
Tomoda, Kiichiro ;
Yamanaka, Shinya .
CELL, 2007, 131 (05) :861-872
[2]
Ascorbate‐enhanced chondrogenesis of ATDC5 cells.[J].F M Altaf;T M Hering;N H Kazmi;J U Yoo;B Johnstone.Eur Cell Mater.2006,
[3]
Effect of the knockdown of podocin mRNA on nephrin and α-actinin in mouse podocyte [J].
Fan, QF ;
Ding, J ;
Zhang, JJ ;
Guan, N ;
Deng, JH .
EXPERIMENTAL BIOLOGY AND MEDICINE, 2004, 229 (09) :964-970
[4]
Regulation of MMP-13 expression by RUNX2 and FGF2 in osteoarthritic cartilage [J].
Wang, XB ;
Manner, PA ;
Horner, A ;
Shum, L ;
Tuan, RS ;
Nuckolls, GH .
OSTEOARTHRITIS AND CARTILAGE, 2004, 12 (12) :963-973
[5]
Histone deacetylase 4 controls chondrocyte hypertrophy during skeletogenesis [J].
Vega, RB ;
Matsuda, K ;
Oh, J ;
Barbosa, AC ;
Yang, XL ;
Meadows, E ;
McAnally, J ;
Pomajzl, C ;
Shelton, JM ;
Richardson, JA ;
Karsenty, G ;
Olson, EN .
CELL, 2004, 119 (04) :555-566
[6]
Parathyroid hormone-related peptide (PTHrP) inhibits Runx2 expression through the PKA signaling pathway [J].
Li, TF ;
Dong, YF ;
Ionescu, AM ;
Rosier, RN ;
Zuscik, MJ ;
Schwarz, EM ;
O'Keefe, RJ ;
Drissi, H .
EXPERIMENTAL CELL RESEARCH, 2004, 299 (01) :128-136
[7]
Transplantation of skin fibroblasts expressing BMP-2 promotes bone repair more effectively than those expressing Runx2 [J].
Hirata, K ;
Tsukazaki, T ;
Kadowaki, A ;
Furukawa, K ;
Shibata, Y ;
Moriishi, T ;
Okubo, Y ;
Bessho, K ;
Komori, T ;
Mizuno, A ;
Yamaguchi, A .
BONE, 2003, 32 (05) :502-512
[8]
Runx2 expression and action in chondrocytes are regulated by retinoid signaling and parathyroid hormone-related peptide (PTHrP) [J].
Iwamoto, M ;
Kitagaki, J ;
Tamamura, Y ;
Gentili, C ;
Koyama, E ;
Enomoto, H ;
Komori, T ;
Pacifici, M ;
Enomoto-Iwamoto, M .
OSTEOARTHRITIS AND CARTILAGE, 2003, 11 (01) :6-15
[9]
Cbfa1/Runx2 gene expression in articular chondrocytes of the mice temporomandibular and knee joints in vivo [J].
Kuboki, T ;
Kanyama, M ;
Nakanishi, T ;
Akiyama, K ;
Nawachi, K ;
Yatani, H ;
Yamashita, K ;
Takano-Yamamoto, T ;
Takigawa, M .
ARCHIVES OF ORAL BIOLOGY, 2003, 48 (07) :519-525
[10]
Retrovirus-mediated gene transfer and expression cloning: powerful tools in functional genomics.[J].Toshio Kitamura;Yuko Koshino;Fumi Shibata;Toshihiko Oki;Hideaki Nakajima;Tetsuya Nosaka;Hidetoshi Kumagai.Experimental Hematology.2003, 11