诱导子对丹参酚酸类化合物含量及合成酶的影响

被引:0
作者
宛国伟
机构
[1] 西北农林科技大学
关键词
丹参; 诱导子; 水杨酸; 咖啡酸; 丹酚酸B;
D O I
暂无
年度学位
2008
学位类型
硕士
摘要
本文以丹参叶片愈伤组织为材料,细胞悬浮培养为手段,探讨了水解酪蛋白(Casein acids hydrolysate, CAH)、钴离子(Co2+)、丹参根腐病病原菌(Fusarium solani, FS)、密环菌(Armillaria mellea, AM)和水杨酸(salicylic acid, SA))等5种诱导子对培养细胞的生长、丹参酚酸类化合物的合成积累、酚酸类化合物代谢途径苯丙氨酸解氨酶(PAL)、酪氨酸氨基转移酶(TAT)、肉桂酸4-羟化酶(C4H)、多酚氧化酶(PPO)四种酶的活性以及与细胞抗氧化相关酶活性的影响。为提高培养细胞中丹参酚酸类化合物(丹酚酸B、咖啡酸)的含量及调控酚酸类的代谢提供依据。 1.丹参酚酸类化合物合成代谢途径相关酶PAL、TAT、C4H、PPO的测定条件为:PAL的最适缓冲液pH 8.8、酶促反应温度37℃、酶促反应时间60 min、底物苯丙氨酸浓度为20 mmol?L-1 ;TAT的最适缓冲液pH 7.3、酶促反应温度37℃、酶促反应时间30 min、底物α-酮戊二酸浓度为17 mmol?L-1 ; C4H的最适缓冲液pH 7.6、酶促反应温度30℃、酶促反应时间30 min、底物肉桂酸浓度为25 mmol?L-1;TAT的最适缓冲液pH 6.0、酶促反应温度30℃、酶促反应时间30 min、底物邻苯二酚浓度为10 mmol?L-1。 2.水解酪蛋白、密环菌、丹参根腐病病原菌诱导子在一定浓度下诱导培养细胞生长量增加,但是浓度过高抑制生长。钴离子、水杨酸诱导子抑制培养细胞的生长,且随浓度的增大,抑制作用增强。培养液pH随水解酪蛋白诱导子浓度而提高,呈先上升后下降的趋势;随丹参根腐病病原菌诱导子浓度增大而降低;密环菌诱导子处理对pH变化不显著;钴离子和水杨酸处理导致悬浮培养液酸化,pH变化随钴离子、水杨酸的浓度增大而逐渐增大。诱导子处理均使细胞培养液的电导率减小,随水解酪蛋白、水杨酸诱导子浓度增大呈先降低后增大的趋势,而密环菌和钴离子诱导子处理引起电导率的变化差异不显著;培养液的电导率随丹参根腐病病原菌处理浓度的增大而急剧降低。 3. 5种诱导子对咖啡酸和丹酚酸B含量影响差异显著。水解酪蛋白、水杨酸、钴离子诱导子在低浓度时诱导咖啡酸和丹酚酸B的合成积累,高浓度时表现出抑制效果;水杨酸可诱导酚酸类化合物分泌到培养细胞外;丹参根腐病病原菌可诱导咖啡酸和丹酚酸B的合成积累;蜜环菌抑制咖啡酸的合成,对丹酚酸B含量影响不显著。 4.外源水杨酸处理诱导丹参PAL、TAT、PPO活性的升高,且随着水杨酸浓度的增大,诱导高峰越提前;PAL、TAT活性与丹参咖啡酸、丹酚酸B含量呈正相关,说明PAL、TAT是丹参苯丙烷代谢途径关键酶;外源水杨酸处理抑制C4H活性, C4H活性与咖啡酸、丹酚酸B含量呈负相关,说明C4H不是丹参苯丙烷代谢途径关键酶。 5.水杨酸诱导子诱导SOD、POD、CAT活性升高,但诱导时间和强度与水杨酸的浓度有关,具有差异性。水杨酸诱导子浓度越大,诱导SOD活性高峰出现时间越早;不同浓度的水杨酸诱导POD活性高峰均出现在8 h;诱导CAT活性高峰与浓度成负相关,即浓度越小,诱导活性高峰出现的时间越早。水杨酸诱导子诱导培养细胞内可溶性蛋白含量升高,但差异不显著,3个浓度(SA1(5 mg/L)、SA2(31.25 mg/L)和SA3(93.75 mg/L))水平的水杨酸均可使细胞内可溶性蛋白外渗。
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[1]
Effect of salicylic acid on phenylpropanoids and phenylalanine ammonia-lyase in harvested grape berries [J].
Chen, JY ;
Wen, PF ;
Kong, WF ;
Pan, QH ;
Zhan, JC ;
Li, JM ;
Wan, SB ;
Huang, WD .
POSTHARVEST BIOLOGY AND TECHNOLOGY, 2006, 40 (01) :64-72
[2]
Elicitor-induced rosmarinic acid accumulation and secondary metabolism enzyme activities in Salvia miltiorrhiza hairy roots [J].
Yan, Q ;
Shi, M ;
Ng, J ;
Wu, HY .
PLANT SCIENCE, 2006, 170 (04) :853-858
[3]
Elicitor signal transduction leading to production of plant secondary metabolites [J].
Zhao, J ;
Davis, LC ;
Verpoorte, R .
BIOTECHNOLOGY ADVANCES, 2005, 23 (04) :283-333
[4]
Salicylic acid induced the expression of phenylalanine ammonia-lyase gene in grape berry [J].
Wen, PF ;
Chen, JY ;
Kong, WF ;
Pan, QH ;
Wan, SB ;
Huang, WD .
PLANT SCIENCE, 2005, 169 (05) :928-934
[5]
Role of ABA, salicylic acid, calcium and hydrogen peroxide on antioxidant enzymes induction in wheat seedlings [J].
Agarwal, S ;
Sairam, RK ;
Srivastava, GC ;
Tyagi, A ;
Meena, RC .
PLANT SCIENCE, 2005, 169 (03) :559-570
[6]
Kinetic analysis of the inhibition of phenylalanine ammonia-lyase by 2-aminoindan-2-phosphonic acid and other phenylalanine analogues [J].
Appert, C ;
Zon, J ;
Amrhein, N .
PHYTOCHEMISTRY, 2003, 62 (03) :415-422
[7]
Rosmarinic acid.[J].Maike Petersen;Monique S.J Simmonds.Phytochemistry.2003, 2
[8]
Treatment of poplar callus with ferulic and sinapic acids II: effects on related monolignol biosynthetic enzyme activities [J].
Hamada, K ;
Tsutsumi, Y ;
Nishida, T .
JOURNAL OF WOOD SCIENCE, 2003, 49 (04) :366-370
[9]
Cinnamic acid 4-hydroxylase from cell cultures of the hornwort Anthoceros agrestis [J].
Petersen, M .
PLANTA, 2003, 217 (01) :96-101
[10]
Jasmonate is involved in the induction of tyrosine aminotransferase and tocopherol biosynthesis in Arabidopsis thaliana [J].
Sandorf, I ;
Holländer-Czytko, H .
PLANTA, 2002, 216 (01) :173-179