大黄蒽醌衍生物对大鼠结肠及LoVo细胞水通道蛋白表达的调节效应与其机制研究

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作者
张文生
机构
[1] 第四军医大学
关键词
大黄/大黄总蒽醌/大黄蒽醌衍生物/大黄酸/大黄素; 泻下效应; 结肠; 水通道蛋白/水通道蛋白2/水通道蛋白4; LoVo细胞; 调节效应; 蛋白激酶A; 细胞信号;
D O I
暂无
年度学位
2008
学位类型
硕士
摘要
大黄以其显著的“泻下”效用而著称,临床应用广泛。大黄发挥泻下的活性物质为大黄蒽醌衍生物,而其中大黄素、大黄酸为主要的游离型大黄蒽醌衍生物。既往研究证实,大黄能够抑制结肠肠腔水分的吸收,增加肠腔内水含量而致泻。水通道蛋白(aquaporin, AQPs)是近年来发现的主要负责水分子转运的一类膜蛋白质家族,其中已确定水通道蛋白2(aquaporin2, AQP2)和水通道蛋白4(aquaporin4, AQP4)在结肠表达,并且对结肠内水分的吸收起着重要作用。那么,大黄蒽醌衍生物是否通过调节结肠上皮细胞(colonic epithelial cells, CEC)AQP2和AQP4的表达而影响结肠内水分的吸收,从而起泻下作用呢,目前尚无研究探讨。 我们首先观察了大黄总蒽醌对大鼠的泻下效应及其对大鼠结肠AQP4的调节效应。而后,我们以来源于结肠腺癌的细胞系LoVo细胞为靶细胞,采用免疫细胞化学(immuocytochemistry, ICC)的方法探讨了AQP2和AQP4在LoVo细胞的表达,并进一步采用western blot(WB)和RT-PCR等方法,观察了大黄酸、大黄素对体外培养LoVo细胞AQP2和AQP4表达的调节效应。最后,我们通过观察蛋白激酶A(protein kinase, PKA)在大黄素下调LoVo细胞AQP4过程中的作用机制,探讨大黄素下调LoVo细胞AQP4的细胞信号传导通路。现报告如下。 实验一:大黄蒽醌衍生物对大鼠结肠APQ4表达的调节效应 目的探讨大黄总蒽醌对SD大鼠的泻下效应及对其结肠AQP4表达的影响。方法雄性SD大鼠24只随机分为正常对照组、大黄总蒽醌泻下剂量组及大黄总蒽醌高剂量组,分别予大黄总蒽醌悬液或蒸馏水灌胃5 d后,观察大鼠结肠粪便含水量的变化;应用WB、RT-PCR观察其近端结肠AQP4表达的变化。结果大黄总蒽醌泻下剂量组及高剂量组灌胃5 d后,大鼠结肠内粪便含水量显著增加,同时其近端结肠AQP4表达显著降低且表现为量效关系。 实验二:大黄素、大黄酸对LoVo细胞AQP4表达的调节效应 目的探讨大黄酸、大黄素对体外培养LoVo细胞AQP4的调节效应。方法体外培养LoVo细胞并予不同质量浓度大黄酸或大黄素含药培养液24 h作用及大黄酸或大黄素含药培养液(20 mg/L)不同时间作用。采用ICC法观察LoVo细胞AQP4蛋白表达定位,采用WB及RT-PCR检测AQP4蛋白及mRNA的表达。结果AQP4蛋白主要表达在LoVo细胞的细胞膜上,在细胞浆也有少量表达;大黄酸及大黄素能够显著下调体外培养LoVo细胞的AQP4蛋白及mRNA表达,且表现为剂量-效应及时间-效应关系。 实验三:大黄素、大黄酸对LoVo细胞AQP2表达的调节效应 目的探讨大黄酸、大黄素对体外培养LoVo细胞AQP2的调节效应。方法体外培养LoVo细胞并予不同质量浓度大黄酸或大黄素含药培养液24 h处理及大黄酸或大黄素含药培养液(20 mg/L)不同时间处理。其中不同质量浓度分为高剂量组(大黄酸或大黄素40 mg/L)、中剂量组(大黄酸或大黄素20 mg/L)、低剂量组(大黄酸/大黄素10 mg/L)、正常对照组;不同作用时间分为0 h、3 h、6 h、12 h、24 h、48 h组。采用ICC法观察LoVo细胞AQP2蛋白表达定位,采用WB及RT-PCR检测AQP2蛋白及mRNA的表达。结果AQP2主要表达于LoVo细胞的细胞膜上。大黄素、大黄酸均可抑制LoVo细胞AQP2的表达。剂量-效应方面,随着大黄素或大黄酸作用质量浓度的增加,LoVo细胞AQP2蛋白及mRNA均进行性下降:其中与对照组比较,AQP2蛋白在中剂量组及高剂组显著降低(P<0.05; P<0.01);AQP2 mRNA中剂量组及高剂组显著降低(大黄酸中剂量组P<0.05,余为P<0.01)。在时间效应方面,大黄酸48 h作用组LoVo细胞AQP2蛋白及mRNA表达极低而未测值;AQP2蛋白在大黄素、大黄酸作用3 h及6 h组表达上升但无统计学意义,但在其它时间组均表达下降(大黄素作用12 h,24 h,48 h组,P<0.01;大黄酸作用24 h组,P<0.05)。AQP2 mRNA在大黄素作用各时间组均显著性下降(P<0.01),而在大黄酸作用12 h、24 h组也显著性下降(P<0.05; P<0.01)。 实验四:大黄素通过PKA途径对LoVo细胞AQP4的调节 目的通过观察LoVo细胞蛋白激酶A(PKA)活性变化,探讨大黄素下调LoVo细胞AQP4的细胞信号传导通路。方法体外培养LoVo细胞并予大黄素含药培养(20 mg/L),8-Bromo-cAMP含药培养液液(100μmol/L),大黄素(20 mg/L)及8-Bromo-cAMP(100μmol/L)含药培养液,不含药培养液等作用24 h,采用WB检测各组AQP4蛋白的表达,采用非放射性PKA活性检测试剂盒检测各组PKA活性水平。结果PKA激动剂8-Bromo-cAMP使LoVo细胞PKA活性水平及AQP4表达水平显著升高;而大黄素对LoVo细胞PKA活性及AQP4表达的调节则显示为与8-Bromo-cAMP相反的结果。8-Bromo-cAMP与大黄素共同作用于LoVo细胞时,8-Bromo-cAMP能够对抗大黄素对LoVo细胞PKA活性及AQP4表达的下调效应。 结论: 1.大黄总蒽醌能够有效抑制大鼠结肠AQP4的表达,使其结肠内水含量增加,从而起到泻下作用; 2. AQP2及AQP4均表达于LoVo细胞,LoVo细胞可以作为研究药物对AQP2和AQP4调节效应的靶细胞;大黄素、大黄酸可以有效抑制LoVo细胞AQP2和AQP4的基因转录与翻译;由此推断,大黄素、大黄酸通过抑制CEC AQP2和AQP4的表达,使结肠内水含量增加从而发挥泻下效应; 3. PKA参与了大黄素对LoVo细胞AQP4的下调作用,提示大黄素可能通过调节PKA这一细胞信号传导分子的活性从而下调LoVo细胞AQP4表达; 4.本研究阐明了大黄蒽醌衍生物对CEC及LoVo细胞的调节效应并探讨了可能的细胞传导信号;为从AQPs的角度探讨大黄蒽醌衍生物的泻下药理机制提供了新的视野。
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共 46 条
[1]
中华人民共和国药典.[M].国家药典委员会编;.化学工业出版社.2005,
[2]
Molecular mechanisms and drug development in aquaporin water channel diseases: aquaporin superfamily (superaquaporins): expansion of aquaporins restricted to multicellular organisms..Morishita Y;Sakube Y;Sasaki S ; et al;.J Pharmacol Sci.2004,
[3]
Liposomal curcumin with and without oxaliplatin: effects on cell growth; apoptosis; and angiogenesis in colorectal cancer..Li;L.;Ahmed;B.;Mehta;K;.Mol Cancer Ther.2007,
[4]
Aquaporin-2 protein dynamics within the cell [J].
Sasaki, Sei ;
Noda, Yumi .
CURRENT OPINION IN NEPHROLOGY AND HYPERTENSION, 2007, 16 (04) :348-352
[5]
Subcellular localization of KL-6 mucin in colorectal carcinoma cell lines: Association with metastatic potential and cell morphology [J].
Guo, Qian ;
Tang, Wei ;
Inagaki, Yoshinori ;
Kokudo, Norihiro ;
Sugawara, Yasuhiko ;
Karako, Hirona ;
Nakata, Munehiro ;
Makuuchi, Masatoshi .
ONCOLOGY REPORTS, 2007, 17 (05) :1057-1060
[6]
Proteomic knowledge of human aquaporins [J].
Magni, Fulvio ;
Sarto, Cecilia ;
Ticozzi, Davide ;
Soldi, Monica ;
Bosso, Niccolo ;
Mocarelli, Paolo ;
Kienle, Marzia Galli .
PROTEOMICS, 2006, 6 (20) :5637-5649
[7]
Identification of a novel aquaporin, AQP12, expressed in pancreatic acinar cells [J].
Itoh, T ;
Rai, T ;
Kuwahara, M ;
Ko, SBH ;
Uchida, S ;
Sasaki, S ;
Ishibashi, K .
BIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL RESEARCH COMMUNICATIONS, 2005, 330 (03) :832-838
[8]
Aquaporin expression is downregulated in a murine model of colitis and in patients with ulcerative colitis, Crohn's disease and infectious colitis [J].
Hardin, JA ;
Wallace, LE ;
Wong, JFK ;
O'Loughlin, EV ;
Urbanski, SJ ;
Gall, DG ;
MacNaughton, WK ;
Beck, PL .
CELL AND TISSUE RESEARCH, 2004, 318 (02) :313-323
[9]
Aquaporin-9 is expressed in a mucus-secreting goblet cell subset in the small intestine.[J].Shinji Okada;Takumi Misaka;Ichiro Matsumoto;Hirohito Watanabe;Keiko Abe.FEBS Letters.2003, 1
[10]
Water transport by epithelia of the digestive tract [J].
Masyuk, AI ;
Marinelli, RA ;
LaRusso, NF .
GASTROENTEROLOGY, 2002, 122 (02) :545-562